外泌體的提取方法，先用含無外泌體血清的培養(yǎng)基對人脂肪來源間充質干細胞進行饑餓培養(yǎng)，這樣可使干細胞處于正常生長狀態(tài)，不會被克制生長增殖，其所分泌的外泌體所包含的有效物質也更貼近其自然狀態(tài)下的外泌體，然后將含有外泌體的培養(yǎng)上清液進行低速差速離心(即先一離心處理、再第二離心處理)以去除細胞及其碎片，用100kd超濾管對低速差速離心后的離心液進行超濾濃縮得到外泌體濃度更高的超濾液，將超濾液經過第三離心處理去除雜質后直接用0.22μm過濾器過濾除菌，過濾掉粒徑為220nm以上的物質，進一步得到含顆粒粒徑小于220nm的濃縮液，因超濾濃縮處理和第三離心處理使得液體量濃縮，這樣過濾除菌效率得到較大提高，較后將濃縮液進行超速離心的第四離心處理分離提取到外泌體。該外泌體的提取方法，既結合了差速離心，又結合了超濾和超速離心，通過該提取流程，較終可高效地從人脂肪來源間充質干細培養(yǎng)上清液中提取到高濃度、高純度的外泌體，具有操作簡單、成本低，適合產業(yè)化生產的特點。外泌體提取：基于聚合物的沉淀技術通常包括將樣本與含聚合物的沉淀溶液混合。無錫正規(guī)外泌體提取試劑推薦廠家

研究中研究人員發(fā)現(xiàn)，胃病細胞周圍富含TAM。TAM以M2極化表型為特征，并促進胃病細胞在體外和體內的遷移。此外，研究人員發(fā)現(xiàn)M2衍生的外泌體決定了TAMs介導的遷移活動。通過使用質譜方法，研究人員確定載脂蛋白E（ApoE）是M2巨噬細胞衍生的外泌體中高度特異性和有效的蛋白質。ApoE是一種M2特異性且高度豐富的來源于M2外泌體的蛋白質，是決定胃病細胞遷移潛力的主要驅動因素。然而，來自ApoE-/-的小鼠M2巨噬細胞的外泌體在體外和體內對胃病細胞的遷移沒有顯著影響。在機制上，M2巨噬細胞衍生的外泌體介導ApoE啟動的PI3K-Akt信號通路，并在TAM和受體胃病細胞之間進行細胞間轉移，促進細胞骨架的遷移?？偟膩碚f，該研究發(fā)現(xiàn)外泌體介導的功能性ApoE蛋白從TAM轉移到一些病癥細胞，促進了胃病細胞的遷移。南京外泌體提取試劑銷售廠家靜置10～15分鐘，留取沉淀物備用。

外泌體表面有其特異性標記物（如CD63、CD9蛋白），用包被抗標記物抗體的磁珠與外泌體囊泡孵育后結合，即可將外泌體吸附并分離出來。磁珠法具有特異性高、操作簡便、不影響外泌體形態(tài)完整等優(yōu)點，但是效率低，外泌體生物活性易受pH和鹽濃度影響，不利于下游實驗，難以普遍普及。聚乙二醇（PEG）可與疏水性蛋白和脂質分子結合共沉淀，早先應用于從血清等樣本中收集菌類，現(xiàn)在也被用來沉淀外泌體，其原理可能與競爭性結合游離水分子有關。利用PEG沉淀外泌體存在不少問題：比如純度和回收率低，雜蛋白較多（假陽性），顆粒大小不均一，產生難以去除的聚合物，機械力或者吐溫-20等化學添加物將會破壞外泌體等，因此發(fā)表文章時易受質疑。如純度和回收率低，雜蛋白較多（假陽性），顆粒大小不均一，產生難以去除的聚合物。

外泌體的提取方法：1.超速離心法（差速離心）。超離法是較常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行，可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數(shù)量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩(wěn)定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2.密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續(xù)分布的密度階層，是一種區(qū)帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時，對離心時間極為敏感。外泌體的提取、分離方法：梯度密度離心法。

外泌體的提取分離：1、超速離心法（差速離心）。超離法是常用的外泌體純化手段，采用低速離心、高速離心交替進行（如圖所示），可分離到大小相近的囊泡顆粒。超離法因操作簡單，獲得的囊泡數(shù)量較多而廣受歡迎，但過程比較費時，且回收率不穩(wěn)定（可能與轉子類型有關），純度也受到質疑；此外，重復離心操作還有可能對囊泡造成損害，從而降低其質量。2、密度梯度離心。在超速離心力作用下，使蔗糖溶液形成從低到高連續(xù)分布的密度階層，是一種區(qū)帶分離法。通過密度梯度離心，樣品中的外泌體將在1.13-1.19g/ml的密度范圍富集。此法獲得的外泌體純度較高，但步驟繁瑣，耗時。外泌體提取：密度梯度離心。昆明外泌體提取試劑哪里買

直接把外泌體從尿液中沉降下來，無須分離培養(yǎng)人尿液來源細胞并收集培養(yǎng)基。無錫正規(guī)外泌體提取試劑推薦廠家

外泌體提?。撼叽缗抛枭V。尺寸排阻色譜（Size-exclusionchromatography，SEC）是基于大小而非分子量實現(xiàn)分離大分子。該技術應用填充多孔聚合物微球的柱子，分子根據其直徑通過微球，半徑小的分子需要更長的時間才能通過色譜柱的孔隙遷移，而大分子則從色譜柱中更早地洗脫。尺寸排阻色譜可以精確分離大小分子。此外，可以將不同的洗脫溶液應用于該方法。與離心方法相比，色譜分離已被證明具有更多優(yōu)勢，因為通過色譜分離的外泌體不受剪切力的影響，這可能會改變囊泡的結構。目前，SEC是一種普遍接受的分離血液和尿液中外泌體的技術。不過，該方法耗時較長，不適合大量樣本處理無錫正規(guī)外泌體提取試劑推薦廠家