細(xì)胞凍存注意事項(xiàng):1.取細(xì)胞的過程中注意帶好防凍手套,護(hù)目鏡。此項(xiàng)尤為重要,細(xì)胞凍存管可能漏入液氮,解凍時(shí)凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致炸列。2.凍存液的問題:凍存液的配置已是常識(shí),在這里不作詳述,但二甲基亞砜(DMSO)對(duì)細(xì)胞不是完全無毒副作用,在常溫下,二甲基亞砜對(duì)細(xì)胞的毒副作較大,因此,必須在1-2min內(nèi)使凍存液完全融化。如果復(fù)蘇溫度太慢,會(huì)造成細(xì)胞的損傷,二甲基亞砜(DMSO)選擇進(jìn)口產(chǎn)品。3.離心前須加入少量培養(yǎng)液。細(xì)胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度,以減少對(duì)細(xì)胞的損傷。無血清凍存液注意事項(xiàng):本產(chǎn)品凍存細(xì)胞可以在-80°C冰箱保存3年以上。太原無血清細(xì)胞凍存液
使用方法:1)細(xì)胞超凈臺(tái)無菌環(huán)境,1.5mlEP管內(nèi)加入細(xì)胞混懸劑均勻混懸細(xì)胞,細(xì)胞終濃度為5×106個(gè)/ml,混懸液體積為200μl。細(xì)胞凍存劑冰水混合物中預(yù)冷,逐滴加入細(xì)胞凍存劑800μl,細(xì)胞混懸劑與細(xì)胞凍存劑的體積比控制在1:4。2)開啟程序性降溫,降溫速率為1℃/min,較后降溫至-80℃以下進(jìn)行凍存。將比較例1凍存后細(xì)胞的復(fù)蘇率與實(shí)施例5凍存后細(xì)胞的復(fù)蘇率進(jìn)行對(duì)比,具體結(jié)果如附圖1所示,可見采用本發(fā)明的凍存方法能夠明顯提高細(xì)胞的復(fù)蘇率。其他實(shí)施例通過與比較例1進(jìn)行比較,也得到相同的試驗(yàn)結(jié)果。本發(fā)明的凍存方法不僅可以明顯提高凍存后細(xì)胞復(fù)蘇率,同時(shí)還可減少不同批次細(xì)胞凍存復(fù)蘇率不穩(wěn)定、以及避免由血清中的支原體,細(xì)菌,朊細(xì)菌及其他細(xì)菌顆粒引發(fā)的污染。貴陽無血清細(xì)胞凍存液直銷價(jià)降低細(xì)胞外溶液的電解質(zhì)濃度,減少陽離子進(jìn)入細(xì)胞的數(shù)量。
如何提高細(xì)胞凍存成功率:1.沒有控制好細(xì)胞的生長(zhǎng)密度細(xì)胞的密度對(duì)細(xì)胞的生存質(zhì)量有著重要的影響,畢竟它們是一群又不能擠著了也不能孤獨(dú)的嬌貴寶寶。密度過高會(huì)讓細(xì)胞沒有足夠的生存空間,密度過低會(huì)讓細(xì)胞無法互相連接健康生長(zhǎng)。建議大家在細(xì)胞接種前,一定要調(diào)整好適合細(xì)胞生長(zhǎng)的濃度,提高細(xì)胞的存活率。2.溫度控制不達(dá)標(biāo)慢凍快融是細(xì)胞凍存復(fù)蘇的中心關(guān)鍵詞之一。常規(guī)的凍存操作中,都會(huì)要求嚴(yán)格的梯度降溫,常見的是-4℃→-20℃至-40℃→-80℃→液氮,一定要避免溫度原因?qū)е录?xì)胞自取消滅;除非使用了成分經(jīng)過優(yōu)化、經(jīng)過嚴(yán)格測(cè)試的凍存液,才能免去程序降溫這個(gè)繁瑣的步驟。保存的時(shí)候也要保證整個(gè)細(xì)胞都是處于液氮的液面下方,避免溫度對(duì)細(xì)胞存活的影響。
無血清快速細(xì)胞凍存液凍存細(xì)胞復(fù)蘇方法:1、從冰箱里取出細(xì)胞冷凍保存管,立即放入37℃振動(dòng)水浴槽中快速解凍。2、待凍存管中細(xì)胞混合液完全融化后,立即加入1ml細(xì)胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細(xì)胞混合,再將細(xì)胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細(xì)胞培養(yǎng)基的試管中,混合均勻。3、離心收集培養(yǎng)細(xì)胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min),移去上清液。4、清洗細(xì)胞,充分洗凈殘留凍存液。5、加入適量的新鮮細(xì)胞培養(yǎng)基,使用移液管緩緩地均勻細(xì)胞混合液。適量地稀釋后,將細(xì)胞混合液移至事先準(zhǔn)備好的培養(yǎng)瓶中。6、鏡檢后,研究者可根據(jù)各自方法和需要來進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)。無血清凍存液用途:科研高校,無血清細(xì)胞凍存液用于細(xì)胞株凍存。
要折騰嬌貴的細(xì)胞寶寶,必須要在無菌超凈環(huán)境下才行。超凈工作臺(tái),所有的儀器用品提前滅菌,培養(yǎng)箱什么的定期用酒精擦干凈。微生物污染對(duì)細(xì)胞的影響經(jīng)常是開始的時(shí)候沒發(fā)現(xiàn),發(fā)現(xiàn)的時(shí)候已經(jīng)結(jié)束了,所以千萬要小心。除了操作中的各種小細(xì)節(jié),還有一個(gè)實(shí)驗(yàn)雷區(qū),就是配制細(xì)胞凍存液。常見的凍存液配制要遵循培養(yǎng)基+血清+DMSO的成分要求,根據(jù)細(xì)胞實(shí)際判斷成分配比,還建議使用程控儀,注意配制溫度,一個(gè)不小心就又會(huì)影響細(xì)胞的存活效果。學(xué)霸君給各位養(yǎng)細(xì)胞的科研汪們帶來一款細(xì)胞神器——WakoBAMBANKER®即用型無血清細(xì)胞凍存液。無血清凍存液使用方法:收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞,離心去除上清培養(yǎng)液。太原無血清細(xì)胞凍存液
無血清凍存液特性:不需回溫,完全即用型。太原無血清細(xì)胞凍存液
細(xì)胞凍存秘籍:1.在倒置相差顯微鏡上每隔幾分鐘檢查酶處理的進(jìn)展情況。一旦細(xì)胞變圓,輕輕敲擊細(xì)胞瓶使其脫離塑料表面。加入5mL含血清的生長(zhǎng)培養(yǎng)基滅活胰酶??赡苄枰?jiǎng)×业囊埔翰僮鱽硎古囵B(yǎng)容器底部的剩余細(xì)胞脫落,或?qū)⒓?xì)胞團(tuán)塊分解成單細(xì)胞懸浮液。胰酶的去除或失活對(duì)于冷凍細(xì)胞至關(guān)重要。如果游離試劑不能直接滅活,可以通過下一步的離心去除。2.用15ml離心管收集細(xì)胞。取出樣本進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),剩余的細(xì)胞懸液以約100×g離心5分鐘以獲得細(xì)胞沉淀。離心時(shí),用細(xì)胞計(jì)數(shù)板對(duì)細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)。使用臺(tái)盼藍(lán)染液檢查細(xì)胞的活性。太原無血清細(xì)胞凍存液
細(xì)胞凍存液的配制可選用10%的DMSO加上90%的小牛血清,可以現(xiàn)用現(xiàn)配。除了這個(gè)方式,還可選擇20%的DMSO機(jī)上80%的小牛血清,配成兩倍的儲(chǔ)存液,在使用時(shí)細(xì)胞懸液和凍存液按照1:1的比例混勻使用,特別的方便。凍存液可直接置于-20攝氏度的環(huán)境中保存。使用細(xì)胞凍存液需要注意以下幾點(diǎn):1、在使用凍存液前,需要確保細(xì)胞凍存液已經(jīng)完全融化,并要輕輕的混勻。對(duì)融化后的細(xì)胞凍存液要置于4℃的環(huán)境中保存。2、使用凍存液之前應(yīng)該確保凍存前的細(xì)胞生長(zhǎng)情況比較良好,比如說細(xì)胞需要處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,并且凍存的時(shí)候存活率大于90%。3、在使用細(xì)胞凍存液期間,為了保證可以發(fā)揮較佳的效果,建議將細(xì)胞凍存在液氮之中,這...