Real-time PCR原理：所謂實(shí)時熒光定量PCR技術(shù)，是指在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團(tuán)，利用熒光信號積累實(shí)時監(jiān)測整個PCR進(jìn)程，通過標(biāo)準(zhǔn)曲線對未知模板進(jìn)行定量分析的方法。DNA結(jié)合染料法，應(yīng)用一種帶有熒光的、非特異的DNA結(jié)合染料檢測PCR過程中積累的擴(kuò)增產(chǎn)物。檢測所有雙鏈DNA擴(kuò)增產(chǎn)物，包括非特異反應(yīng)產(chǎn)物，如引物二聚體。可對任何雙鏈DNA進(jìn)行定量；不需要探針，因此減少了實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及運(yùn)轉(zhuǎn)成本；適合于大量基因的分析；簡單易用。實(shí)時熒光定量PCR：實(shí)時熒光定量PCR（QuantitativeReal-time PCR）是一種在DNA擴(kuò)增反應(yīng)中，以熒光化學(xué)物質(zhì)測每次聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（PCR）循環(huán)后產(chǎn)物總量的方法。通過內(nèi)參或者外參法對待測樣品中的特定DNA序列進(jìn)行定量分析的方法。Real-time PCR是在PCR擴(kuò)增過程中，通過熒光信號，對PCR進(jìn)程進(jìn)行實(shí)時檢測。由于在PCR擴(kuò)增的指數(shù)時期，模板的Ct值和該模板的起始拷貝數(shù)存在線性關(guān)系，所以成為定量的依據(jù)。PCR可能是分子生物學(xué)中使用很較廣的技術(shù)。寧波細(xì)胞PCR檢測技術(shù)

聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)準(zhǔn)備：PCR引物設(shè)計(jì)，PCR反應(yīng)中有兩條引物，即5′端引物和3′引物。設(shè)計(jì)引物時以一條DNA單鏈為基準(zhǔn)（常以信息鏈為基準(zhǔn)），5′端引物與位于待擴(kuò)增片段5′端上的一小段DNA序列相同；3′端引物與位于待擴(kuò)增片段3′端的一小段DNA序列互補(bǔ)。引物設(shè)計(jì)的基本原則：引物長度：15-30bp，常用為20bp左右。引物堿基：G+C含量以40-60%為宜，G+C太少擴(kuò)增效果不佳，G+C過多易出現(xiàn)非特異條帶。ATGC很好隨機(jī)分布，避免5個以上的嘌呤或嘧啶核苷酸的成串排列參照。廣州血液PCR檢測技術(shù)原理及步驟Real-time PCR在實(shí)驗(yàn)內(nèi)參的設(shè)定主要為了用于靶RNA的定量。

PCR的反應(yīng)條件：dNTP濃度過高會加快反應(yīng)速度，但同時還可以增加堿基的錯誤摻入率。引物濃度過高會引起錯配和非特異性產(chǎn)物擴(kuò)增。TaqDNA聚合酶濃度過高會引起錯配和非特異性產(chǎn)物擴(kuò)增，低則合成產(chǎn)物量減少。TaqDNA聚合酶無校正功能，摻入錯誤率達(dá)2*E-4個核苷酸，一個30個循環(huán)的擴(kuò)增反應(yīng)0.1%-0.25%總錯誤率。在90～95度下可使整個基因組的DNA變性為單鏈。一般94～95度30～60s。時間過長使TaqDNA聚合酶失活和dNTP破壞增多。DNA很快冷卻到40～60度使引物和模板結(jié)合。引物長度在15～25時退火溫度。熱啟動/冷完成聚合酶鏈反應(yīng)是通過新的雜合聚合酶實(shí)現(xiàn)的，這些酶在環(huán)境溫度下不活躍。

Real-time PCR：基線（baseline)：通常是3－15個循環(huán)的熒光信號，同一次反應(yīng)中針對不同的基因需單獨(dú)設(shè)置基線。閾值（threshold)：自動設(shè)置是3-15個循環(huán)的熒光信號的標(biāo)準(zhǔn)偏差的10倍。手動設(shè)置：置于指數(shù)擴(kuò)增期，剛好可以清楚地看到熒光信號明顯增強(qiáng)。同一次反應(yīng)中針對不同的基因可單獨(dú)設(shè)置閾值，但對于同一個基因擴(kuò)增一定要用同一個閾值。Ct值：與起始濃度的對數(shù)成線性關(guān)系，分析定量時候一般取Ct:15-35.太大或者太小都會導(dǎo)致定量的不準(zhǔn)確。相對定量：通過與內(nèi)參基因Ct值之間的相差來計(jì)算基因之間的表達(dá)差異,一般是2-△△Ct?；蛘呤强紤]擴(kuò)增效率的Pfaffl法。通過使用本產(chǎn)品，可以在更短的時間內(nèi)，簡便、低成本地進(jìn)行Real-time PCR檢測。

Real-time PCR雙熒光標(biāo)記探針設(shè)計(jì)原則：具體的其他要求可以具體聯(lián)系設(shè)計(jì)公司，拿到合成好的引物，需要先確認(rèn)引物的性能。可以用這對引物先擴(kuò)增梯度稀釋后的標(biāo)準(zhǔn)品（標(biāo)準(zhǔn)品介紹見后續(xù)內(nèi)容）。由不同梯度標(biāo)準(zhǔn)品的加量和其對應(yīng)的Ct值，描繪出一條標(biāo)準(zhǔn)曲線。這里要注意根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線得到的參數(shù)是非常重要的。引物性能確認(rèn)：1.決定系數(shù)R2大于0.98，越接近于1，結(jié)果越可靠。2.擴(kuò)增效率一般要求在0.8-1.2，越接近于1，越好。3.檢測的靈敏度，必須確認(rèn)，通常要求35個循環(huán)以內(nèi)，一般可以得到比較好的定量結(jié)果，30個循環(huán)以內(nèi)，沒有非特異性擴(kuò)增產(chǎn)生。4.NTC是必須要確認(rèn)的，通常要求30個循環(huán)內(nèi)沒有引物二聚體產(chǎn)生。Real-time PCR探針法實(shí)驗(yàn)結(jié)果穩(wěn)定重複性好，特異性更高。寧波細(xì)胞PCR檢測技術(shù)

在PCR產(chǎn)物中，由于內(nèi)標(biāo)與靶模板的長度不同。寧波細(xì)胞PCR檢測技術(shù)

聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)的試驗(yàn)污染：陽性對照，在建立PCR反應(yīng)實(shí)驗(yàn)室及一般的檢驗(yàn)單位都應(yīng)設(shè)有PCR陽性對照，它是PCR反應(yīng)是否成功、產(chǎn)物條帶位置及大小是否合乎理論要求的一個重要的參考標(biāo)志。陽性對照要選擇擴(kuò)增度中等、重復(fù)性好，經(jīng)各種鑒定是該產(chǎn)物的標(biāo)本，如以重組質(zhì)粒為陽性對照，其含量宜低不宜高（100個拷貝以下）。但陽性對照尤其是重組質(zhì)粒及高濃度陽性標(biāo)本，其對檢測或擴(kuò)增樣品污染的可能性很大。因而當(dāng)某一PCR試劑經(jīng)自己使用穩(wěn)定。寧波細(xì)胞PCR檢測技術(shù)

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