DLS使用由于粒子的布朗運動而產(chǎn)生的波動散射光的強度來估計外泌體顆粒的大小分布及其zeta電位。DLS樣品制備方便，只需要簡單的過濾，測量速度較快，需要的樣品體積較少。但由于動態(tài)光散射技術(shù)是基于光強測量，散射光的強度與粒徑的六次方成正比，使得當(dāng)測量多種粒徑的混合懸浮液時，通常會偏向于檢測較大粒徑產(chǎn)生的散射光，比較難檢測到較小顆粒。所以DLS不適合對粒徑分布較寬的外泌體樣本的測量，只適合尺寸較為均一的外泌體樣本，并且無法測量樣品中外泌體的濃度。外泌體內(nèi)容物的進(jìn)入或外泌體信號的誘導(dǎo)可能涉及配體受體誘導(dǎo)的細(xì)胞內(nèi)信號或融合。鼻腔灌洗液外泌體

ELISA與WB的原理一樣，在抗體包被的微孔板中加入待測樣品、封閉、一抗孵育，洗滌后加入酶標(biāo)待測物形成抗體-抗原-酶標(biāo)抗體復(fù)合物，徹底洗滌后加顯色劑并用酶標(biāo)儀測定吸光值，結(jié)尾用標(biāo)準(zhǔn)曲線計算外泌體表達(dá)量。ELISA能實現(xiàn)對外泌體特異性蛋白的定量。其他外泌體鑒定方法還有微流體測定法和外泌體蛋白質(zhì)組學(xué)分析等。由于外泌體在各種生命過程中的重要作用及其作為疾病生物標(biāo)志物和藥物輸送系統(tǒng)的潛力，人們對此領(lǐng)域的興趣越來越高。盡管目前在技術(shù)上取得了長足的進(jìn)步，但尚未建立對外泌體進(jìn)行準(zhǔn)確和標(biāo)準(zhǔn)化鑒定以及定量的方法，關(guān)于外泌體的量應(yīng)由囊泡顆粒的數(shù)量、囊泡蛋白的量或囊泡數(shù)與蛋白之比來定義仍存在比較多爭論。建立外泌體分離、表征以及效價測定的標(biāo)準(zhǔn)化方法將是外泌體作為診斷和診療用途之前需要解決的問題。外泌體 超聲法采用磁珠法時，外泌體生物活性易受PH和鹽濃度影響。

免疫印跡或蛋白質(zhì)印跡是分析外泌體較常用的方法之一，其原理是外泌體上特異性抗原與抗體結(jié)合。首先對樣品進(jìn)行處理將囊泡裂解并將蛋白質(zhì)變性，變性后，通過SDS-PAGE分離蛋白質(zhì)，然后將其轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素膜或聚偏二氟乙烯（PVDF）膜上并暴露于針對目的抗原的抗體中。抗體特異性識別膜表面上的抗原，然后將膜暴露于第二抗體中。通過二抗的熒光標(biāo)簽或與二抗偶聯(lián)的辣根過氧化物酶或堿性磷酸酶基團(tuán)進(jìn)行檢測。常用的標(biāo)記蛋白為CD63、CD81、TSG101和ALIX等。但是此方法的特異性和重復(fù)性會受到所用抗體質(zhì)量的限制。外泌體的直徑比微泡的要小，后者直徑為100nm-1μm。

外泌體中常見的細(xì)胞質(zhì)蛋白是Rabs蛋白，是鳥苷酸三磷酸酶家族的一種。它可以調(diào)節(jié)外泌體膜與受體細(xì)胞的融合，有文獻(xiàn)報道稱RAB4,RAB5和RAB11主要出現(xiàn)在早期以及回收的核內(nèi)體中，RAB7和RAB9主要出現(xiàn)在晚期的核內(nèi)體。現(xiàn)有大量的研究發(fā)現(xiàn)外泌體中含有40種RAB蛋白。除了RAB蛋白，外泌體中富含具有外泌體膜交換以及融合作用的膜聯(lián)蛋白（包括膜聯(lián)蛋白1、2、4、5、6、7、11等）。外泌體膜上富含參與外泌體運輸?shù)乃目缒さ鞍准易澹–D63,CD81和CD9)）、熱休克蛋白家族（(HSP60,HSP70,HSPA5,CCT2和HSP90以及一些細(xì)胞特異性的蛋白包括A33（結(jié)腸上皮細(xì)胞來源）、MHC-Ⅱ(抗原提呈細(xì)胞來源)、CD86(抗原提呈細(xì)胞來源)以及乳凝集素。外泌體的提取的方式：PS親和法。

酶聯(lián)免疫吸附測定（ELISA）：將其中一種針對外泌體表面抗原的抗體固定在微孔板的表面上，將外泌體樣品暴露于含有固定抗體的孔中，由于抗體-抗原相互作用，表達(dá)抗原的外泌體將被捕獲固定在板上。將未捕獲的樣品內(nèi)容物洗掉，并使用另一種抗體檢測固定的外泌體。ELISA已用于從尿液、血漿和血清中分離出外泌體，當(dāng)使用標(biāo)準(zhǔn)液（已知外泌體的量）創(chuàng)建標(biāo)準(zhǔn)曲線時，甚至可以進(jìn)行定量。但是，此方法需要通過超速離心或超濾對樣品進(jìn)行預(yù)處理。同樣，流場-流分離與紫外線分析儀和光散射檢測器相結(jié)合已被用于分析外泌體的大小和純度。外泌體可以將PD-L1轉(zhuǎn)運至其他PD-L1表達(dá)低或沒有PD-L1的細(xì)胞，并可能與PD-1結(jié)合。組織外泌體測序

外泌體可以作為“天然的納米粒子”來進(jìn)行藥物遞送。鼻腔灌洗液外泌體

外泌體分離的主要挑戰(zhàn)之一是消除納米級污染物，包括干擾外泌體標(biāo)志物解析的游離核酸和脂蛋白。超速離心是目前分離外泌體的主要技術(shù)。盡管如此，它仍難以符合臨床應(yīng)用所需的標(biāo)準(zhǔn)，主要是由于該方法得到的外泌體純度不足，產(chǎn)量較低，完整性欠佳且分離純化操作耗時長。其他方法，例如基于聚乙二醇（PEG）的沉淀，磷脂酰絲氨酸親和捕獲，尺寸排阻色譜法和膜親和捕獲，近年來已經(jīng)出現(xiàn)在特定的應(yīng)用中，但是只適用于特定場景。近來，非對稱流場-流分離方法已被用于從細(xì)胞和瘤子培養(yǎng)基中高分辨率地分選EV亞群，但其通量受到繁瑣的樣品制備程序的影響。單一分析耗時的過程也限制了其普遍的應(yīng)用。因此，目前亟需開發(fā)創(chuàng)新技術(shù)以提高外泌體分離純化的效率，純度，產(chǎn)量，速度和耐用性?；诔瑸V的技術(shù)提供了潛在的有前途的替代方法，但它們也有缺點。在切向流過濾中，使進(jìn)料流平行于多孔膜流動，以避免堵塞。然而，盡管已實現(xiàn)使用切向流過濾從大量條件細(xì)胞培養(yǎng)基中濃縮外泌體，但受制于其一次性模塊的成本高，高剪切應(yīng)力，難以處理小體積樣品等因素而難以應(yīng)用于臨床分析。鼻腔灌洗液外泌體

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