無(wú)血清細(xì)胞凍存液：1.逐滴加入5-7mL的預(yù)熱的培養(yǎng)基到15mL的離心管中，加入的同時(shí)輕輕混勻。2.室溫（15-25°C）以300xg離心5分鐘。3.吸出培養(yǎng)基，使細(xì)胞沉淀完好無(wú)損。使用2mL血清移液管輕輕將細(xì)胞沉淀重懸于1mL的培養(yǎng)基中。小心保持細(xì)胞作為聚集體。4.將0.5mL的細(xì)胞混合物轉(zhuǎn)移到含有培養(yǎng)基的預(yù)包被的6孔板的培養(yǎng)孔中（例如，每個(gè)冷凍管可以鋪板兩個(gè)孔）。注意：鋪板多少孔可能需要根據(jù)凍存的細(xì)胞聚集體數(shù)量進(jìn)行調(diào)整。通常在復(fù)蘇后，要比在常規(guī)的傳代鋪板更多的細(xì)胞聚集體數(shù)量。將培養(yǎng)板放入37°C培養(yǎng)箱。快速前后左右的搖晃培養(yǎng)板數(shù)次，將細(xì)胞聚集體分布均勻。24小時(shí)內(nèi)不要移動(dòng)培養(yǎng)板。無(wú)血清細(xì)胞凍存液的優(yōu)勢(shì)：因不含血清，批次間差異小。南昌無(wú)血清細(xì)胞凍存液

細(xì)胞凍存是將細(xì)胞放在低溫環(huán)境，減少細(xì)胞代謝，以便長(zhǎng)期儲(chǔ)存的一種技術(shù)。細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一，起到了細(xì)胞保種的作用。細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一，利用凍存技術(shù)可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長(zhǎng)狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來(lái)，這樣在需要的時(shí)候再?gòu)?fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。目前現(xiàn)有技術(shù)中，細(xì)胞凍存液中的主要成分有10％二甲基亞砜(DMSO)、20％～90％胎牛血清(FBS)、剩余組分為完全培養(yǎng)基。培養(yǎng)基以及FBS可為細(xì)胞提供必要的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。DMSO是一種滲透性保護(hù)劑，能夠降低細(xì)胞冰點(diǎn)，減少冰晶的形成，從而達(dá)到降低細(xì)胞損傷的保護(hù)效果。但FBS屬于動(dòng)物源性物質(zhì)，成分比較復(fù)雜，在臨床應(yīng)用上存在潛在的風(fēng)險(xiǎn)，也增加了污染的幾率，并且由于凍存液中含有動(dòng)物血清，會(huì)導(dǎo)致凍存液的成分存在不穩(wěn)定的因素。溫州正規(guī)無(wú)血清細(xì)胞凍存液生產(chǎn)廠家無(wú)需程序降溫，細(xì)胞復(fù)蘇率90%以上。

無(wú)血清快速細(xì)胞凍存液凍存液成分。無(wú)血清細(xì)胞，無(wú)血清干細(xì)胞及MSC凍存液。保存條件：儲(chǔ)存于4℃以下。質(zhì)量保障期從產(chǎn)品的生產(chǎn)日期起，為期3年。3個(gè)月以上沒(méi)有使用凍存液計(jì)劃時(shí)，盡可能冷凍保存。為避免重復(fù)凍融過(guò)程可能導(dǎo)致的凍存液品質(zhì)下降和性能降低，推薦將100ml產(chǎn)品分裝小瓶后，再存放于4℃以下或-20℃冰箱凍存。無(wú)血清細(xì)胞凍存液，細(xì)胞凍存與復(fù)蘇后，平均活細(xì)胞回收比例超過(guò)80%。與含血清凍存液比較，BI無(wú)血清凍存液細(xì)胞存活率都有較佳的表，BI無(wú)血清細(xì)胞凍存液也適用于動(dòng)物血清培養(yǎng)的細(xì)胞凍存。

無(wú)血清細(xì)胞凍存液：產(chǎn)品介紹：無(wú)血清細(xì)胞凍存液是一款針對(duì)細(xì)胞凍存和復(fù)蘇所研發(fā)的即用型細(xì)胞凍存液。該凍存液采用獨(dú)特的凍存配方，包括DMSO在內(nèi)的凍存保護(hù)劑復(fù)合物，**降低了細(xì)胞在凍存過(guò)程中冰晶對(duì)于細(xì)胞的損傷。凍存液中添加了葡萄糖，氨基酸等各種細(xì)胞營(yíng)養(yǎng)成分，***提高了細(xì)胞的活力和復(fù)蘇率。無(wú)血清細(xì)胞凍存液不含牛血清，無(wú)任何動(dòng)物源組分，可維持干細(xì)胞低分化狀態(tài)，并且可減少各類***和支原體污染的風(fēng)險(xiǎn)，確保細(xì)胞凍存安全。與傳統(tǒng)細(xì)胞凍存液相比，本產(chǎn)品重懸細(xì)胞后可直接凍存于-80℃，無(wú)需程序降溫。無(wú)血清細(xì)胞凍存液，為多種保護(hù)劑組合。

細(xì)胞凍存的注意事項(xiàng)：1.為保持細(xì)胞較大存活率，一般都采用慢凍存融的方法。2.凍存物距液氮面越近溫度越低。標(biāo)準(zhǔn)的低凍速度為－1℃~12℃/分鐘，當(dāng)溫度下降達(dá)－25℃時(shí)，下降速度可增至－5~－10℃/分鐘，到－100℃時(shí)則可迅速凍入液氮中。因此要適當(dāng)掌握凍存物下降入液氮中的速度，過(guò)快能影響細(xì)胞內(nèi)水分透出，太慢則促冰晶形成。3.初次凍存者在下降凍存時(shí)，宜先用細(xì)木棒伸入罐中探測(cè)液面位置，然后需用溫度計(jì)與凍存物并行的辦法，以觀測(cè)下降凍存物的速度、凍存物與液氮液面距離和溫度三者關(guān)系，當(dāng)已掌握以上各參數(shù)和凍存技術(shù)熟練后，光按下降時(shí)間和下降距離便可獲理想凍存效果。無(wú)血清凍存液注意事項(xiàng)：凍存液加入細(xì)胞后，請(qǐng)盡快放入-80C冰箱凍存。合肥無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品介紹

無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能：用包括人白蛋白等蛋白組分替代血清的用途，無(wú)動(dòng)物源組分。南昌無(wú)血清細(xì)胞凍存液

無(wú)血清細(xì)胞凍存液凍存細(xì)胞實(shí)驗(yàn)步驟：選擇凍存處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1.按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2.按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。（參考：5×105至5×106cells/ml）。3.取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量，置于離心管中，離心收集培養(yǎng)細(xì)胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min）。移去離心管中的上清液。4.加入適量的無(wú)血清型細(xì)胞凍存液于離心管中，使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻，制成細(xì)胞混合液。5.將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6.直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-80℃冰箱，長(zhǎng)期冷凍保存。7.若研究者需要液氮保存時(shí)，可將完全凍結(jié)的凍存管（放入-80℃冰箱后至少一晝夜）移至-196℃液氮罐。南昌無(wú)血清細(xì)胞凍存液