無血清細(xì)胞凍存液使用方法:選擇凍存處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1)按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2)按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。(參考:5×105至5×106cells/ml)。3)取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量,置于離心管中,離心收集培養(yǎng)細(xì)胞(參考離心條件:1,000~2,000rpm,4℃,3~5min)。移去離心管中的上清液。4)加入適量的無血清型細(xì)胞凍存液于離心管中,使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻,制成細(xì)胞混合液。5)將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6)直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-80℃以下冰箱,長(zhǎng)期冷凍保存。無血清凍存液注意事項(xiàng):若需長(zhǎng)期凍存細(xì)胞,請(qǐng)轉(zhuǎn)移至液氮罐中貯存。唐山無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融,實(shí)驗(yàn)證明這樣可以較大限度的保存細(xì)胞活力。目前細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑,這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對(duì)水的通透性,加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外,減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成,從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法,這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時(shí)間內(nèi)即融化,避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對(duì)細(xì)胞造成損傷。細(xì)胞凍存是細(xì)胞培養(yǎng)、引種、保種和保證實(shí)驗(yàn)順利進(jìn)行的重要技術(shù)手段。在細(xì)胞建株和建系中,及時(shí)凍存原始細(xì)胞是十分重要的。在雜交瘤單克隆抗體的制備過程中,雜交瘤細(xì)胞、每次克隆化得到的亞克隆細(xì)胞的凍存保種常常是必不可少的實(shí)驗(yàn)操作。因?yàn)樵跊]有建立一個(gè)穩(wěn)定的細(xì)胞系或穩(wěn)定分泌抗體的細(xì)胞系的時(shí)候,細(xì)胞的培養(yǎng)過程中隨時(shí)可能因細(xì)胞的污染、分泌抗體能力的喪失或遺傳變異等等導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)失敗,如果沒有原始細(xì)胞的凍存,則因?yàn)樯鲜龅囊馔舛肮ΡM棄。上海無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商可以在冰晶形成之前,優(yōu)先結(jié)合細(xì)胞外的水分子。
細(xì)胞凍存秘籍:程序1.凍存前檢查凍存前,細(xì)胞應(yīng)處于指數(shù)生長(zhǎng)期,確保細(xì)胞處于健康狀態(tài)。理想情況下,應(yīng)在收獲細(xì)胞前24小時(shí)更換培養(yǎng)基。建議對(duì)培養(yǎng)物進(jìn)行微生物污染物,特別是支原體的檢測(cè),并通過適當(dāng)?shù)姆椒?,如STR分析確定其身份。如果在培養(yǎng)過程中使用物品,那么建議在冷凍前1到2周不使用物品,這樣如果出現(xiàn)污染,可以更容易地發(fā)現(xiàn)。2.收集細(xì)胞通常,您可以使用常規(guī)細(xì)胞傳代的實(shí)驗(yàn)程序來收獲細(xì)胞。細(xì)胞收獲期間盡可能溫和操作。本程序推薦的試劑量是針對(duì)為75平方厘米(T-75)培養(yǎng)瓶;若使用其他培養(yǎng)容器,請(qǐng)相應(yīng)調(diào)整所用試劑量。A.使用無菌吸管,取出并丟棄培養(yǎng)基。請(qǐng)妥善處置與細(xì)胞接觸的任何材料和溶液。B.用5到10mlCMF-PBS沖洗細(xì)胞,去除所有痕量的血清。C.加入3到5ml的胰酶(在CMF-PBS中),37℃孵育。預(yù)熱酶溶液通常會(huì)縮短處理時(shí)間。
細(xì)胞凍存注意事項(xiàng):離心問題:目前主要有兩種見解。一種是解凍后的細(xì)胞懸液直接吹打均勻后分裝到培養(yǎng)瓶中進(jìn)行培養(yǎng),第二天換液。因?yàn)殡x心的目的是兩個(gè),去除DMSO,去除死細(xì)胞,這個(gè)是標(biāo)準(zhǔn)流程,但對(duì)一般人來說,把握不好離心轉(zhuǎn)速和時(shí)間,轉(zhuǎn)的不夠活細(xì)胞沉底的少,細(xì)胞就全被扔掉了,轉(zhuǎn)過了活細(xì)胞會(huì)受壓過大,死亡。此外在操作過程中容易污染,所以不推薦。另一種說法為細(xì)胞懸液中含有二甲基亞砜(DMSO),DMSO對(duì)細(xì)胞有一定的毒副作用,所以須將離心后的液體前倒凈,且一定倒干凈。我在試驗(yàn)中按照常規(guī)的離心分裝的方法進(jìn)行復(fù)蘇,結(jié)果無有異常。無血清凍存液注意事項(xiàng):請(qǐng)選擇對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞進(jìn)行凍存。
細(xì)胞凍存的基本原理:細(xì)胞代謝過程需要各種蛋白酶的參與,而這些蛋白酶在環(huán)境溫度低于-70℃時(shí)會(huì)集體不工作,低溫貯藏的目的是通過較低溫使細(xì)胞代謝活動(dòng)近乎停止。細(xì)胞因此進(jìn)入休眠狀態(tài),使細(xì)胞“不會(huì)老”,所以可以長(zhǎng)期保存。因?yàn)閮鋈谶^程對(duì)所有細(xì)胞和組織都是有一定傷害的,因此,需要開發(fā)出有效的技術(shù)來防止細(xì)胞死亡和損傷。低溫保護(hù)劑可保護(hù)細(xì)胞不受細(xì)胞內(nèi)冰凍影響,目前多采用DMSO,甘油,乙二醇和丙二醇等滲透型低溫保護(hù)劑。它們的作用機(jī)制包括:自由進(jìn)入細(xì)胞,取代水,使冰點(diǎn)下降,充當(dāng)鹽的二次溶劑,提高細(xì)胞膜對(duì)水的通透性。無血清快速細(xì)胞凍存液:減少各類病毒、霉菌和支原體等的污染,確保凍存細(xì)胞安全。上海無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
在緩慢的凍結(jié)條件下,能使細(xì)胞內(nèi)水份在凍結(jié)前透出細(xì)胞。唐山無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
細(xì)胞凍存,我們應(yīng)該注意哪些事項(xiàng):1、凍存液比例一般是培養(yǎng)基:血清:DMSO=7:2:1或5:4:1;動(dòng)物種屬的原代細(xì)胞凍存液可采用的比例是培養(yǎng)基:血清:DMSO=0:9:1,即直接用血清重懸細(xì)胞再加入DMSO,盡管如此,原代細(xì)胞的復(fù)蘇成活率還是很低。2、有文獻(xiàn)表明,細(xì)胞以l℃/min的速度冷凍存活率較髙,因?yàn)檫@一速度可以很好的控制細(xì)胞內(nèi)部晶體的產(chǎn)生。我們實(shí)際操作不可能將速度控制的這么精確,目前慣用的就是4℃30min、-20℃1h30min、-80℃2h后轉(zhuǎn)入液氮中。唐山無血清細(xì)胞凍存液供應(yīng)商
細(xì)胞凍存液的配制可選用10%的DMSO加上90%的小牛血清,可以現(xiàn)用現(xiàn)配。除了這個(gè)方式,還可選擇20%的DMSO機(jī)上80%的小牛血清,配成兩倍的儲(chǔ)存液,在使用時(shí)細(xì)胞懸液和凍存液按照1:1的比例混勻使用,特別的方便。凍存液可直接置于-20攝氏度的環(huán)境中保存。使用細(xì)胞凍存液需要注意以下幾點(diǎn):1、在使用凍存液前,需要確保細(xì)胞凍存液已經(jīng)完全融化,并要輕輕的混勻。對(duì)融化后的細(xì)胞凍存液要置于4℃的環(huán)境中保存。2、使用凍存液之前應(yīng)該確保凍存前的細(xì)胞生長(zhǎng)情況比較良好,比如說細(xì)胞需要處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,并且凍存的時(shí)候存活率大于90%。3、在使用細(xì)胞凍存液期間,為了保證可以發(fā)揮較佳的效果,建議將細(xì)胞凍存在液氮之中,這...