細(xì)胞凍存的基本原理：細(xì)胞代謝過程需要各種蛋白酶的參與，而這些蛋白酶在環(huán)境溫度低于-70℃時(shí)會(huì)集體不工作，低溫貯藏的目的是通過較低溫使細(xì)胞代謝活動(dòng)近乎停止。細(xì)胞因此進(jìn)入休眠狀態(tài)，使細(xì)胞“不會(huì)老”，所以可以長期保存。因?yàn)閮鋈谶^程對所有細(xì)胞和組織都是有一定傷害的，因此，需要開發(fā)出有效的技術(shù)來防止細(xì)胞死亡和損傷。低溫保護(hù)劑可保護(hù)細(xì)胞不受細(xì)胞內(nèi)冰凍影響，目前多采用DMSO，甘油，乙二醇和丙二醇等滲透型低溫保護(hù)劑。它們的作用機(jī)制包括：自由進(jìn)入細(xì)胞，取代水，使冰點(diǎn)下降，充當(dāng)鹽的二次溶劑，提高細(xì)胞膜對水的通透性。在凍存細(xì)胞時(shí)將細(xì)胞懸浮于凍存液中，可使冰點(diǎn)降低，提高細(xì)胞膜對水的通透性。蕪湖無血清細(xì)胞凍存液服務(wù)電話

無血清細(xì)胞凍存液通用于各種動(dòng)物細(xì)胞株（tumour細(xì)胞和常規(guī)細(xì)胞），大部分的干細(xì)胞，凍存細(xì)胞可在-80℃長期保存。不含動(dòng)物源性蛋白，不含血清成分，可有效減少各類細(xì)菌、病毒和支原體等污染，保證凍存細(xì)胞的安全。該凍存液含DMSO、葡萄糖等各種細(xì)胞營養(yǎng)成分，提高細(xì)胞存活率和活力，亦適合于無血清培養(yǎng)細(xì)胞和蛋白表達(dá)細(xì)胞。產(chǎn)品優(yōu)勢：1、無需程序性降溫，可直接將細(xì)胞置于-80℃凍存，凍存液無需稀釋。2、細(xì)胞可于-80℃長期保存。3、凍存液不含血清等，較大降低細(xì)胞污染的可能性。保存方法：冰袋運(yùn)輸，4℃保存，保質(zhì)期一年。長沙無血清細(xì)胞凍存液廠家推薦無血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能：2-8℃即可穩(wěn)定保存，無需冷凍，即取即用。

細(xì)胞凍存的注意事項(xiàng)：1.為保持細(xì)胞較大存活率，一般都采用慢凍存融的方法。2.凍存物距液氮面越近溫度越低。標(biāo)準(zhǔn)的低凍速度為－1℃~12℃/分鐘，當(dāng)溫度下降達(dá)－25℃時(shí)，下降速度可增至－5~－10℃/分鐘，到－100℃時(shí)則可迅速凍入液氮中。因此要適當(dāng)掌握凍存物下降入液氮中的速度，過快能影響細(xì)胞內(nèi)水分透出，太慢則促冰晶形成。3.初次凍存者在下降凍存時(shí)，宜先用細(xì)木棒伸入罐中探測液面位置，然后需用溫度計(jì)與凍存物并行的辦法，以觀測下降凍存物的速度、凍存物與液氮液面距離和溫度三者關(guān)系，當(dāng)已掌握以上各參數(shù)和凍存技術(shù)熟練后，光按下降時(shí)間和下降距離便可獲理想凍存效果

無血清細(xì)胞凍存液與含血清細(xì)胞凍存液對比：傳統(tǒng)的細(xì)胞凍存液是使用培養(yǎng)基、血清和DMSO按照一定的比例混合，其中DMSO的含量是10%，血清的含量是10%，統(tǒng)稱為含血清細(xì)胞凍存液。含血清細(xì)胞凍存液的一般的凍存方法是梯度降溫凍存法，如先將冷凍管置于4℃冰箱10分鐘，然后移至-20℃冰箱30分鐘，再移至-80℃冰箱保存16-18個(gè)小時(shí)（或隔夜），較后才移至液氮罐中進(jìn)行長期的儲(chǔ)存。可見，含血清細(xì)胞凍存液凍存細(xì)胞時(shí)遇到的問題：1.凍存細(xì)胞時(shí)需現(xiàn)配凍存液(如購買市面上通用的含血清細(xì)胞凍存液，此步可省略)。2.需要程序降溫（4℃→-20℃→-80℃→液氮），步驟繁瑣，耗時(shí)耗力。3.含血清，細(xì)胞污染(病毒、霉菌和支原體等)的風(fēng)險(xiǎn)更高。4.血清批次、品質(zhì)間差異導(dǎo)致凍存液的批次間差異。5.需液氮凍存，且不能原位（如孔板）凍存。無血清細(xì)胞凍存液存儲(chǔ)條件：為避免重復(fù)凍融過程可能導(dǎo)致的凍存液品質(zhì)下降和性能降低。

細(xì)胞凍存注意事項(xiàng)：1、細(xì)胞貼壁少的問題：教科書中說明凍存細(xì)胞解凍時(shí)1ml細(xì)胞液要加10ml－15m培養(yǎng)液，而在我的試驗(yàn)中的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為培養(yǎng)基越少細(xì)胞越容易貼附。2、復(fù)蘇細(xì)胞分裝的問題：試驗(yàn)中我的經(jīng)驗(yàn)總結(jié)為復(fù)蘇1管細(xì)胞一般可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中，分裝過多，細(xì)胞濃度過低，不利于細(xì)胞的貼壁。3、加培養(yǎng)基的量放入問題：這個(gè)量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度，從如果你加培養(yǎng)基的太少，那么DMSO的濃度就會(huì)比較大，就會(huì)影響細(xì)胞生長，從以前的資料來看，DMSO的濃度在小于0.5%的時(shí)候?qū)σ话慵?xì)胞沒有什么影響，還有一個(gè)說法是1％。所以如果你的凍存液的濃度是10％DMSO的話那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度避免細(xì)胞內(nèi)部水分子形成冰晶損傷細(xì)胞,同時(shí)另一些保護(hù)劑不能穿透細(xì)胞。開封無血清細(xì)胞凍存液推薦廠家

PH，電解質(zhì)等的改變，進(jìn)而促使細(xì)胞死亡。蕪湖無血清細(xì)胞凍存液服務(wù)電話

細(xì)胞凍存，我們應(yīng)該注意哪些事項(xiàng)：DMSO快速稀釋會(huì)對細(xì)胞造成滲透性損傷，使存活率下降50%。對于DMSO凍存的細(xì)胞，復(fù)蘇后應(yīng)緩慢稀釋成細(xì)胞懸液：1）凍存液：培養(yǎng)基=1:1稀釋成細(xì)胞懸液后離心，然后重懸至培養(yǎng)皿中培養(yǎng)，隔天換液；2）凍存液：培養(yǎng)基=1:10稀釋成細(xì)胞懸液，不用離心，直接放置到培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)2-4小時(shí)后，換液。上述兩種方法都是比較常用的細(xì)胞復(fù)蘇方法，后者更適用于原代細(xì)胞或比較難養(yǎng)的細(xì)胞。液氮內(nèi)的細(xì)胞凍存較長時(shí)間不要超過半年，凍存在液氮中的細(xì)胞應(yīng)一段時(shí)間內(nèi)進(jìn)行更替。一個(gè)細(xì)胞系在培養(yǎng)一個(gè)月后，可復(fù)蘇一管新的細(xì)胞確保其質(zhì)量沒有發(fā)生太大變化，傳代幾次后，再凍存留種。蕪湖無血清細(xì)胞凍存液服務(wù)電話