細(xì)胞凍存是細(xì)胞保存的主要方法之一。利用凍存技術(shù)將細(xì)胞置于-196℃液氮中低溫保存，可以使細(xì)胞暫時(shí)脫離生長(zhǎng)狀態(tài)而將其細(xì)胞特性保存起來(lái)，這樣在需要的時(shí)候再?gòu)?fù)蘇細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)。細(xì)胞凍存的原理：細(xì)胞凍存及復(fù)蘇的基本原則是慢凍快融，實(shí)驗(yàn)證明這樣可以較大限度的保存細(xì)胞活力。目前細(xì)胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護(hù)劑，這兩種物質(zhì)能提高細(xì)胞膜對(duì)水的通透性，加上緩慢冷凍可使細(xì)胞內(nèi)的水分滲出細(xì)胞外，減少細(xì)胞內(nèi)冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細(xì)胞損傷。復(fù)蘇細(xì)胞應(yīng)采用快速融化的方法，這樣可以保證細(xì)胞外結(jié)晶在很短的時(shí)間內(nèi)即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細(xì)胞內(nèi)形成胞內(nèi)再結(jié)晶對(duì)細(xì)胞造成損傷。無(wú)血清細(xì)胞凍存液產(chǎn)品性能：細(xì)胞凍存是細(xì)胞實(shí)驗(yàn)中的一個(gè)常規(guī)技術(shù)。溫州天津無(wú)血清細(xì)胞凍存液

胞冷凍保存方法：選擇凍存處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞有助于提高復(fù)蘇細(xì)胞存活率。1.按照常用方法收集懸浮細(xì)胞或貼壁細(xì)胞于試管中。2.按照培養(yǎng)細(xì)胞密度和所用細(xì)胞凍存管的尺寸計(jì)算所需凍存細(xì)胞數(shù)。（參考：5×105至5×106cells/ml）。3.取相當(dāng)于所需細(xì)胞數(shù)的細(xì)胞懸浮液量，置于離心管中，離心收集培養(yǎng)細(xì)胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min）。移去離心管中的上清液。4.加入適量的無(wú)血清型細(xì)胞凍存液于離心管中，使細(xì)胞濃度為5×105至5×106cells/ml。緩慢地混合均勻，制成細(xì)胞混合液。5.將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。6.直接將含細(xì)胞混合液的凍存管放入-80℃冰箱，長(zhǎng)期冷凍保存。7.若研究者需要液氮保存時(shí)，可將完全凍結(jié)的凍存管（放入-80℃冰箱后至少一晝夜）移至-196℃液氮罐。溫州無(wú)血清細(xì)胞凍存液哪家好無(wú)血清快速細(xì)胞凍存液：減少各類病毒、霉菌和支原體等的污染，確保凍存細(xì)胞安全。

以前在另一家實(shí)驗(yàn)室的時(shí)候，凍存細(xì)胞根本就沒有講究這些標(biāo)準(zhǔn)操作。凍存的細(xì)胞有293T、PT67、C2C12、MEF(鼠胚胎成纖維細(xì)胞）、HelaS3、HelaD、U2OS、HKC、RK3E、ECO、H292、HSY、COS7、SupT1等。將細(xì)胞酶消化后直接參與離心，加入凍存液（含90%的血清和10%的DMS0)，直接放在-80℃冰箱。兩三天后移入液氮中，較久保存，幾年后細(xì)胞的活力仍沒有什么受損，照常能復(fù)蘇，成活率高。但有三點(diǎn)須注意：（1）一是細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)要好，不能長(zhǎng)得過(guò)稀，同樣也不能過(guò)密，細(xì)胞的狀態(tài)看起來(lái)相當(dāng)健康。70%密度的要保存的細(xì)胞須再長(zhǎng)24h才能全滿，萬(wàn)一細(xì)胞狀態(tài)不好，可以酶消化后再繁殖一次；（2）凍存細(xì)胞的量要留心，不能太密也不能太稀，一般1OOmm培養(yǎng)皿的細(xì)胞凍存為3~4管；（3）存放在-80℃冰箱的時(shí)間不能過(guò)長(zhǎng)，一兩天后轉(zhuǎn)移到液氮罐里。我們也曾取出存放在-80℃冰箱的細(xì)胞，半年還有30%~50%的細(xì)胞有活性，但一年的細(xì)胞就沒有活的。

無(wú)血清細(xì)胞凍存液：細(xì)胞凍存及復(fù)蘇是細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)中的重要技術(shù)，細(xì)胞凍存是細(xì)胞長(zhǎng)期保存的重要手段。細(xì)胞凍存液，作為細(xì)胞凍存時(shí)必須使用的一種溶液，其作用是將需要凍存的細(xì)胞懸浮于凍存液，供給細(xì)胞生命代謝所必須的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)，同時(shí)可以防止或減少冷凍冰晶對(duì)細(xì)胞的損傷作用。在現(xiàn)有技術(shù)中，一般使用培養(yǎng)基、血清和二甲亞砜(DMSO)按照一定比例混合的方法來(lái)凍存細(xì)胞，DMSO用量為10％，過(guò)低的DMSO濃度會(huì)導(dǎo)致凍存效果欠佳，但高濃度的DMSO有較大毒性，會(huì)對(duì)細(xì)胞體造成傷害；且傳統(tǒng)凍存液配方中所使用的血清成本高，增加動(dòng)物病原污染的可能性。此外，有研究表明長(zhǎng)期與胎牛血清接觸的細(xì)胞會(huì)對(duì)溶液介質(zhì)中的胎牛血清發(fā)生內(nèi)吞，內(nèi)吞胎牛血清后的間充質(zhì)干細(xì)胞有可能發(fā)生某些蛋白表達(dá)的變化，應(yīng)用于人體后可發(fā)生異種動(dòng)物蛋白引起的免疫反應(yīng)，不能直接用于臨床輸注。因此，利用含有血清的凍存液凍存的細(xì)胞會(huì)給臨床使用帶來(lái)一定的風(fēng)險(xiǎn)。需液氮凍存，且不能原位（如孔板）凍存。

無(wú)血清細(xì)胞凍存：在細(xì)胞培養(yǎng)中，細(xì)胞凍存是較關(guān)鍵環(huán)節(jié)之一，尤其在細(xì)胞治好、細(xì)胞存儲(chǔ)中對(duì)細(xì)胞凍存更有特殊要求，下面就根據(jù)降溫速度以及凍存液組分對(duì)細(xì)胞凍存做詳細(xì)介紹。根據(jù)降溫速度區(qū)分，細(xì)胞凍存可以分為程序降溫凍存與非程序降溫凍存。根據(jù)凍存方式不同可以分為慢速凍存（程序降溫法）與快速凍存（非程序降溫法）。程序降溫凍存技術(shù)要點(diǎn)是慢凍，標(biāo)準(zhǔn)的凍存程序?yàn)榻禍厮俾?1～-2/℃min；當(dāng)溫度達(dá)-25℃以下時(shí)，可增至-5℃～-10℃/min。之前，常用的傳統(tǒng)方法是將凍存管置于4℃30分鐘--20℃60分鐘--80℃過(guò)夜-液氮罐。不過(guò)，由于步驟較多，間隔時(shí)間又長(zhǎng)，很容易遺忘。之后，人們也開始使用程序降溫盒。將凍存管放入程序降溫盒中，再將程序降溫盒放入-80℃冰箱。以1℃/min的速度進(jìn)行降溫。無(wú)血清凍存液特性：不含動(dòng)物成分。青島無(wú)血清細(xì)胞凍存液廠家直銷

無(wú)血清細(xì)胞凍存液使用方法：將離心管中的細(xì)胞混合液分裝于已標(biāo)示完全的冷凍保存管中。溫州天津無(wú)血清細(xì)胞凍存液

無(wú)血清細(xì)胞凍存液復(fù)蘇細(xì)胞實(shí)驗(yàn)步驟：1.從冰箱里取出細(xì)胞冷凍保存管，立即放入37℃振動(dòng)水浴槽中快速解凍。2.待凍存管中細(xì)胞混合液完全融化后，立即加入1ml細(xì)胞培養(yǎng)基于該冷凍管中與細(xì)胞混合，再將細(xì)胞混合液從凍存管中移入含有9ml該細(xì)胞培養(yǎng)基的試管中，混合均勻。3.離心收集培養(yǎng)細(xì)胞（參考離心條件：1,000~2,000rpm，4℃，3~5min），移去上清液。4.清洗細(xì)胞，充分洗凈殘留凍存液。5.加入適量的新鮮細(xì)胞培養(yǎng)基，使用移液管緩緩地均勻細(xì)胞混合液。適量地稀釋后，將細(xì)胞混合液移至事先準(zhǔn)備好的培養(yǎng)瓶中。溫州天津無(wú)血清細(xì)胞凍存液