取材的基本要求和注意事項(xiàng)敘述如下：一、取材的基本要求（1）取材要注意新鮮和保鮮新鮮組織易于培養(yǎng)成功，取材時(shí)應(yīng)盡量在4~6h內(nèi)能制作成細(xì)胞，盡快入箱培養(yǎng)，若不能即時(shí)培養(yǎng)，應(yīng)將組織浸泡于培養(yǎng)液內(nèi)，于4℃存放。若組織塊較大，應(yīng)在除去表面血塊、壞死組織、脂肪和結(jié)締組織后，切碎于培養(yǎng)液內(nèi)4℃存放，但時(shí)間不能超過(guò)24h。對(duì)于已切碎的組織或血液、淋巴組織應(yīng)加入含10%二甲基亞砜的培養(yǎng)基，按細(xì)胞凍存方式于液氮中冷凍保存。（2）取材應(yīng)嚴(yán)格無(wú)菌所取標(biāo)本材料應(yīng)在無(wú)菌條件下進(jìn)行，為了確保無(wú)菌，對(duì)所取材料若疑有污染的可能，應(yīng)將所取組織在含高濃。當(dāng)細(xì)胞向外遷徙出來(lái)后要注意記錄并去除漂浮的組織塊和殘留的細(xì)胞。開(kāi)封正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒廠家直銷

原代細(xì)胞培養(yǎng)：組織材料若來(lái)自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料，較簡(jiǎn)單的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘，若懸液量大，可適當(dāng)延長(zhǎng)離心時(shí)間，但速度不能太高，延時(shí)也不能太長(zhǎng)，以避免擠壓或機(jī)械損傷細(xì)胞，離心沉淀用無(wú)鈣、鎂PBS洗兩次，用培養(yǎng)基洗一次后，調(diào)整適當(dāng)細(xì)胞濃度后再分瓶培養(yǎng)，若選用懸液中某些細(xì)胞，常采用離心后的細(xì)胞分層液，因?yàn)?，?jīng)離心后由于各種細(xì)胞的比重不同可在分層液中形成不同層，這樣可根據(jù)需要收獲目的細(xì)胞合肥長(zhǎng)沙原代細(xì)胞分離試劑盒原代培養(yǎng)的分離細(xì)胞在初次接觸體外環(huán)境時(shí)，它們之間會(huì)互相影響。

原代細(xì)胞的獲?。好赶ǎ核迷噭耗z原酶和胰酶。膠原酶的配制：建議看相關(guān)的文獻(xiàn)進(jìn)行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進(jìn)行配制，配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內(nèi)預(yù)熱（注意現(xiàn)用現(xiàn)配）。胰酶（酶聯(lián)合法獲取原代細(xì)胞中會(huì)加入胰酶，相關(guān)文章也蠻多的）膠原酶消化時(shí)間：根據(jù)組織特性，消化時(shí)間會(huì)有差異。以小鼠腎細(xì)胞為例，加入膠原酶Ⅰ進(jìn)行消化后，放入37℃培養(yǎng)箱中消化45min~1h左右，期間每10min中震蕩一次，知道組織塊幾乎完全消失為止（若是組織塊剪得非常細(xì)小，時(shí)間可以短一些，30min左右即可）。

原代細(xì)胞轉(zhuǎn)染操作步驟（以24孔培養(yǎng)板為例）：A.細(xì)胞接種：轉(zhuǎn)染前現(xiàn)在接種細(xì)胞，每孔500μl培養(yǎng)基（不可加物品），使細(xì)胞在轉(zhuǎn)染時(shí)密度在30-50%。B.siRNA-RFectPM混合物準(zhǔn)備：1.6pmolsiRNA用50μl無(wú)血清培養(yǎng)基稀釋。2.2μlRFectPM用50μl無(wú)血清培養(yǎng)基稀釋。輕輕混勻，室溫孵育5min。注意：確保在25min內(nèi)執(zhí)行第三步操作，不要過(guò)于延遲。3.孵育5min后，將siRNA稀釋液與RFectPM稀釋液混合（總體積100μl）。輕輕混勻，室溫孵育20min。C.將混合物加到培養(yǎng)的細(xì)胞內(nèi)（完全培養(yǎng)基培養(yǎng)）：1.將100μl混合物加入培養(yǎng)孔內(nèi)，培養(yǎng)孔內(nèi)含有0.5ml培養(yǎng)的細(xì)胞。輕輕晃動(dòng)培養(yǎng)板，混勻。2.37°C培養(yǎng)18-72h，檢測(cè)基因克制效果。如果需要，細(xì)胞培養(yǎng)4-6h時(shí)可以更換培養(yǎng)基，但不是必須。孵育時(shí)間的長(zhǎng)短，取決于細(xì)胞類型、所干擾基因本身及分析方法?？稍O(shè)置不同的孵育時(shí)間進(jìn)行實(shí)驗(yàn)以確定較佳孵育時(shí)間。轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)優(yōu)化:為了提高轉(zhuǎn)染效率，較好對(duì)轉(zhuǎn)染條件進(jìn)行優(yōu)化，特別是開(kāi)始使用。給培養(yǎng)的細(xì)胞提供更多的類似于在體內(nèi)時(shí)細(xì)胞之間的相互作用。

懸浮型原代細(xì)胞：1）必須保持細(xì)胞的懸浮狀態(tài)。可以通過(guò)增加培養(yǎng)液的黏度來(lái)幫助細(xì)胞呈懸浮狀態(tài)，如給培養(yǎng)液中加入低濃度的透明質(zhì)酸復(fù)合物。在有攪拌裝置的培養(yǎng)器皿內(nèi)加入培養(yǎng)液，以5ml為較低限度，否則攪拌時(shí)會(huì)產(chǎn)生氣泡對(duì)細(xì)胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過(guò)快，否則即可使培養(yǎng)液溢出又容易造成污染。如果培養(yǎng)液的量在5ml以下，可以采用旋轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)。給懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞換液時(shí)要注意不要吸出細(xì)胞。2）能夠進(jìn)行懸浮培養(yǎng)的細(xì)胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營(yíng)養(yǎng)成分消耗大，換液時(shí)間隔一般較短。原代細(xì)胞是出了名的難養(yǎng)，對(duì)培養(yǎng)環(huán)境和實(shí)驗(yàn)操作的要求更苛刻。寧波正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒推薦廠家

以5ml為較低限度，否則攪拌時(shí)會(huì)產(chǎn)生氣泡對(duì)細(xì)胞造成傷害。開(kāi)封正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒廠家直銷

細(xì)胞傳代的方法都有哪些：根據(jù)不同的細(xì)胞采取不同的方法。貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用消化法傳代；部分貼壁生長(zhǎng)的細(xì)胞用直接吹打即可傳代；懸浮生長(zhǎng)的細(xì)胞可以采用直接吹打或離心分離后傳代，或用自然沉降法吸除上清后，再吹打。原代培養(yǎng)的開(kāi)始傳代應(yīng)注意的問(wèn)題？細(xì)胞沒(méi)有生長(zhǎng)到足以覆蓋瓶底壁的大部分表面以前，不要急于傳代；原代培養(yǎng)時(shí)細(xì)胞多為混雜生長(zhǎng)，不同的細(xì)胞有不同的消化時(shí)間，因此要根據(jù)需要注意觀察及時(shí)處理，并根據(jù)不同細(xì)胞對(duì)胰蛋白酶的耐受時(shí)間而分離和純化所需要的細(xì)胞；吹打細(xì)胞時(shí)動(dòng)作要輕巧盡可能減少對(duì)細(xì)胞的損傷；開(kāi)始傳代時(shí)細(xì)胞接種數(shù)量要多一些，使細(xì)胞能盡快適應(yīng)新環(huán)境而利于細(xì)胞生存和增值；隨消化分離而脫落的組織塊也可一并傳入新的培養(yǎng)瓶開(kāi)封正規(guī)原代細(xì)胞分離試劑盒廠家直銷