此外，文章作者對每個步驟的樣品進行納米顆粒分析（NTA），結果發(fā)現(xiàn)：澄清環(huán)節(jié)后，M-SAN HQ中鹽核酸酶和Benzonase處理組才出現(xiàn)比較明確的LV病毒顆粒峰；TFF處理后，回流液樣品的LV病毒顆粒峰更加尖銳，表明病毒顆粒分散度更好、穩(wěn)定性更高?；亓饕旱腘TA結果進一步表明，M-SAN HQ中鹽核酸酶處理組只有一個病毒顆粒峰，而Benzonase處理組的回流液中有三個峰。作者推測Benzonase處理組的病毒顆粒還有嚴重的病毒團聚現(xiàn)象，而呈現(xiàn)多峰現(xiàn)象。ArcticZymes廠家管控整個供應鏈及生產流程，協(xié)助客戶進行文件審計及現(xiàn)場審計。云南生理鹽條件中鹽核酸酶70950-202
ArcticZymes Technologies提供獨特特性的鹽活性核酸酶（Salt Active Nucleases，SANs）系列產品，主要包含SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶。這兩款酶都是非特異核酸內切酶，跟Benzonase一樣能高效降解任何形式（雙鏈、單鏈、線狀、環(huán)狀）的DNA和RNA；都來自于深海microbes，通過Pichia pastoris發(fā)酵生產得到。這兩款酶的區(qū)別在于發(fā)揮酶活的適宜鹽濃度不同，——M-SAN HQ中鹽核酸酶的適宜鹽濃度在175mM-250mM，而SAN HQ高鹽核酸酶的適宜鹽濃度在400mM-600mM。甘肅M-SAN中鹽核酸酶70950-150中鹽核酸酶更適合細胞培養(yǎng)體系，相比全能核酸酶，酶用量減少到1/3-1/2，HCD去除效率更高。
宿主細胞DNA殘留的擔憂是基于致ai風險理論，特別是生產細胞系所包含的致ai序列，比如較常見腺病毒基因E1A和E1B（HEK293, PerC.6 和CAP 細胞系），人乳tou瘤病毒E6和E7基因（HeLa細胞系)等。當使用致ai細胞系生產AAV時，下游純化須盡可能減少殘留DNA。工業(yè)上一般使用核酸酶分解殘留DNA，普遍認為小于200 bp的DNA片段可有效降低致ai風險。宿主細胞蛋白殘留與免疫原性、炎癥或過敏性休克有關。盡管與非人類的生產原料相比（非人類細胞系如BHK21或昆蟲細胞，以及輔助病毒如HSV、腺病毒、桿狀病毒），人類細胞免疫原性比較弱。
慢病毒大規(guī)模純化的捕獲步驟包括：膜過濾澄清，隨后切向流過濾/超濾或者體積排阻色譜濃縮。此外，需用核酸酶（benzonase或M-SAN HQ中鹽核酸酶）來去除細胞殘留的、質粒來源的DNA污染。這兩個步驟順序可以調整，依據(jù)項目工藝而定。兩種工藝路線各有優(yōu)缺點：先用核酸酶消化的優(yōu)點是可去除大的DNA片段，且后續(xù)步驟可以去除殘留核酸酶；但所用的核酸酶的量也非常大。與此相反，將核酸酶步驟后置的優(yōu)點是大幅降低核酸酶的量(成本降低)；但后面的步驟必須有將核酸酶去除的能力。此外，后期用核酸酶的缺點是核酸污染可能會結合慢病毒顆粒形成沉淀，進而導致慢病毒在純化中流失，從而影響得率。ArcticZymes的產品開發(fā)、生產、銷售和營銷過程均通過ISO13485質量標準的認證。
在生物工藝中，核酸酶的主要作用是高效消化宿主細胞DNA（HCD），并將其分解成足夠小的片段，以便在下游純化過程中去除。雖然大多數(shù)核酸酶可以在生理鹽條件下高效地將裸DNA降解成微小片段，比如Benzonase和SANs都可以把dsDNA分解成小于8nt的寡核苷酸鏈，但實際生產中的核酸污染情況更加復雜。HCD通常以染色質形式存在，與細胞裂解碎片、病毒顆粒等結合在一起，影響核酸酶的識別及剪切。因此，HCD去除的關鍵在于——核酸酶如何在復雜的生產體系中識別并剪切HCD。M-SAN HQ中鹽核酸酶是用Pichia pastoris表達的重組非特異內切核酸酶。浙江ArcticZymes中鹽核酸酶70950
中鹽核酸酶能夠將單鏈及雙鏈的DNA及RNA，消化成5個堿基為主的寡核苷酸oligos。云南生理鹽條件中鹽核酸酶70950-202
病毒載體作為細胞藥物生產的關鍵原材料，直接關系到細胞產品質量。載體質量的控制和工藝穩(wěn)定性和批間一致性都是關系到產品能否產業(yè)化的關鍵。在生產純化過程中，需要去除上游過程中的培養(yǎng)基成分、誘導劑、宿主蛋白和核酸等雜質，但是由于逆轉錄病毒顆粒比較大，高異質表面糖蛋白，而且活性易于受剪切影響，對下游純化提出了巨大的挑戰(zhàn)。目前病毒載體純化方法包括超速離心、離子交換層析、分子排阻層析、親和層析、滲濾等。各種方法各有利弊，就產業(yè)化而言，離子交換純化效果比較好，條件易于摸索，易于規(guī)模放大。云南生理鹽條件中鹽核酸酶70950-202
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