超濾作為一種膜分離技術(shù)，普遍應(yīng)用于生物樣品的濃縮、脫鹽和緩沖液置換，其原理是樣本在力的作用下，通過(guò)超濾膜孔徑的篩濾，大分子量的顆粒被截留下來(lái)，而水、溶劑和低分子量溶質(zhì)則允許透過(guò)膜，從而達(dá)到濃縮、脫鹽和緩沖液置換的目的，這種方法較大的特點(diǎn)是操作簡(jiǎn)便、快速、高效，可同時(shí)濃縮和純化分子，一般來(lái)說(shuō)超濾的回收率能夠達(dá)到90％以上，因此得到許多人的青睞。一種超濾離心管，包括主管，主管為頂部開(kāi)口底部封閉結(jié)構(gòu)，主管開(kāi)口處安裝有頂蓋，主管內(nèi)安裝有內(nèi)管，內(nèi)管上下貫通，內(nèi)管底面貼合有超濾膜，超濾膜將內(nèi)管底面包覆，超濾膜底面貼合有支撐板，超濾膜位于內(nèi)管底面與支撐板之間，內(nèi)管底部安裝有底托，內(nèi)管配合底托將超濾膜、支撐板壓緊，內(nèi)管、超濾膜、支撐板、底托與主管中位于底托以下的容腔空間連通。超濾離心管可以通過(guò)配合其他實(shí)驗(yàn)室設(shè)備使用，如高速冷凍機(jī)、凝膠電泳儀等來(lái)達(dá)到更好的效果。北京濃縮超濾離心管規(guī)格

以下是處理超濾管，重復(fù)利用超濾管的步驟。倒出超濾管里的水，用milliQ水輕輕潤(rùn)洗幾次，【若管底有可見(jiàn)的蛋白沉淀，可以先加入水，然后用設(shè)備頭吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉淀懸起，然后倒掉，不可用自來(lái)水猛沖】然后加入0.2M的NaOH溶液，室溫放置20min，期間平衡超濾管。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液，將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個(gè)小時(shí),再換新的水,放置幾個(gè)小時(shí)，不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來(lái)水洗，內(nèi)壁再用MilliQ水洗干凈。取出浸沒(méi)的管芯，加至接近滿的MilliQ水，50ml管也加滿MilliQ水，將管芯慢慢放入50ml。離心管，排出部分水，然后蓋上蓋子，放4度保存，直到下次使用。一般來(lái)說(shuō)，按照上述步驟和注意事項(xiàng)，每根管用三四年不會(huì)壞。北京濃縮超濾離心管規(guī)格使用超濾離心管時(shí)應(yīng)注意避免與酸、堿等化學(xué)物質(zhì)接觸，以免損壞其結(jié)構(gòu)和性能。

離心過(guò)程中注意是否發(fā)生蛋白沉淀，導(dǎo)致堵管。若發(fā)生沉淀，要確定沉淀的具體原因，是蛋白濃度過(guò)高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時(shí)超濾，降低濃度的辦法解決，后者的方法是換不同的緩沖溶液，直到蛋白不發(fā)生沉淀為止。用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時(shí)候，輕輕加入新的Buffer（經(jīng)0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續(xù)三次，之后一次的濃縮終體積根據(jù)需要的蛋白濃度而定，一般不多于500ul，也有濃縮至200ul以內(nèi)的情況。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達(dá)到1000倍以上，基本上可以達(dá)到換buffer的目的。

超濾離心管是內(nèi)部裝有超濾膜的用于濃縮和凈化生物樣本的一次性耗材。15ML的超濾離心管可處理樣品量達(dá)20ML，具有快速超過(guò)濾功能，能夠達(dá)到較高的濃縮系數(shù)，易于從稀釋液和復(fù)雜的樣本組合進(jìn)行濃縮液回收。豎式設(shè)計(jì)以及其雙面的超大過(guò)濾面積能提供快速的樣本處理和較高的樣本回收率(通常大于90%稀薄的初始溶液)，并能進(jìn)行80倍濃縮。典型的處理時(shí)間為15至40分鐘。豎式設(shè)計(jì)將溶質(zhì)極化和之后造成的濾膜結(jié)垢降至低，過(guò)濾裝置中的物理止濾點(diǎn)防止過(guò)濾器旋轉(zhuǎn)過(guò)度使樣本干燥和造成樣本損失。濃縮液用移液管從過(guò)濾器的樣本槽中收集，而超過(guò)濾濾出液則收集到所提供的離心管中。該裝置可在擺桶或定角轉(zhuǎn)子中旋轉(zhuǎn)。的離心管有超過(guò)7種不同的截留分子量(截留分子量,MWCO)3Kda，5Kda，10Kda，30Kda，50Kda，100Kda，500Kda等。超濾離心管也可用于血清學(xué)檢測(cè)和診斷，以確定人類或動(dòng)物體內(nèi)某些抗體的存在與否。

超濾作為一種膜分離技術(shù)，普遍應(yīng)用于生物樣品的濃縮、脫鹽和緩沖液置換，其原理是溶液在力的作用下，通過(guò)超濾膜孔徑的篩濾，大分子量的顆粒被截留下來(lái)，而水、溶劑和低分子量溶質(zhì)則允許透過(guò)膜，從而達(dá)到濃縮、脫鹽和緩沖液置換的目的，這種方法較大的特點(diǎn)是操作簡(jiǎn)便、快速、高效，可同時(shí)濃縮和純化分子。如何使用超濾心離心管？1. 使用角轉(zhuǎn)子加到超濾裝置上，較大樣本量為15 毫升（Anavo Ultra-15）。2. 將帶蓋過(guò)濾裝置放入離心機(jī)轉(zhuǎn)子內(nèi); 用一個(gè)類似的裝置來(lái)平衡。3. 使用定角轉(zhuǎn)子時(shí)，將薄膜面板朝上定位，較大旋轉(zhuǎn) 5000 xg，旋轉(zhuǎn) 30 分鐘。4. 為了回收濃縮的溶質(zhì)，在過(guò)濾裝置的底部插入一個(gè)移液管，通過(guò)左右掃動(dòng)的方式將樣品抽離，以保證總回收率。超濾液可貯存在離心管中。說(shuō)明：為達(dá)到較佳回收率，離心后應(yīng)立即取出濃縮樣品。超濾離心管還可用于制備高純度的酶、蛋白質(zhì)等生物制品，以應(yīng)用于不同領(lǐng)域的實(shí)驗(yàn)室操作。山東離心管制造廠

使用超濾離心管時(shí)應(yīng)注意避免過(guò)度旋轉(zhuǎn)造成樣品變性或降解，并影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果。北京濃縮超濾離心管規(guī)格

超濾離心管使用注意事項(xiàng)：當(dāng)濃縮到剩下1ml時(shí)，取50ul緩沖溶液，加入10ul流穿，看有沒(méi)變藍(lán)色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開(kāi)始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mgml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測(cè)，繼續(xù)加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過(guò)程中注意是否發(fā)生蛋白沉淀，導(dǎo)致堵管。若發(fā)生沉淀，要確定沉淀的具體原因，是蛋白濃度過(guò)高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時(shí)超濾，降低濃度的辦法解決，后者的方法是換不同的緩沖溶液，直到蛋白不發(fā)生沉淀為止。北京濃縮超濾離心管規(guī)格